Sterile diet for larvae of Chrysomya megacephala (Fabricius, 1794)
perspectives of use in larval therapy
DOI:
https://doi.org/10.9789/2175-5361.rpcfo.v17.12828Keywords:
Larvae debridement therapy, homogenate-based diet, blowfly, sterile dietAbstract
Objective: To develop an agar-based diet that allows the larvae to feed for up to 48 hours. Method: Bovine lung homogenate was added to the agar base to meet the nutritional needs of insects, as a control group blood agar was used. The viability and growth of immature larvae of Chrysomya megacephala were evaluated after 48 hours on sterilized or non-sterilized bovine lung/homogenized agar diets at three different protein concentrations: 5%, 10% and 15%. Results: Larval viability at different concentrations of artificial bovine lung/homogenized agar diet was considered high. The tested diets had enough nutrients for the larvae to grow from 0.334 to 0.533 cm in 48 hours. Conclusion: Blood agar can be replaced by the alternative bovine lung/homogenized agar diet, as it is easier to produce, more economical, practical and nutritious for C. megacephala larvae.
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References
Zumpt F. Myiasis in Man and Animals in the Old World: A Textbook for Physicians, Veterinarians, and Zoologists. Michigan University, Michigan; 1965.
Valviesse VRGA, Ferraz ACP, Proença B, Werneck GRN, Aguiar VM, Lessa CSS. Míiase com exposição de calota craniana causada pela associação de Cochliomyia hominivorax (Coquerel, 1858), Cochliomyia macellaria (Fabricius, 1775) e Chrysomya albiceps (Wiedemann, 1819), (Diptera: Calliphoridae) em um paciente atendido em Hospital Público, Rio de Janeiro. Entomotropica 29: 191–196; 2014.
Greenberg B. Flies as Forensic Indicators. Journal of Medical Entomology [Internet]. 1991 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 28: 565–577. Disponível em: https://doi.org/10.1093/jmedent/28.5.565
Wells JD, Kurahashi H. Chrysomya megacephala (Fabricius) (Diptera : Calliphoridae) development: Rate, variation and the implications for forensic entomology. Medical Entomology and Zoology [Internet]. 1994 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 45: 303–309. Disponível em: https://doi.org/10.7601/mez.45.303_1
Oliveira-Costa, J. Entomologia Forense: Quando Os Insetos São Vestígios. 3º Ed. Campinas. Millennium Editora, 502p; 2011.
Dallavecchia DL, Filho RGS, Figuereido NMA, Coelho VMA. Esterilização da superfície dos ovos de Chrysomya megacephala (fabricius, 1794) para utilização em biodesbridamento. Rev. Pesqui. (Univ. Fed. Estado Rio J., Online). [Internet]. 2010 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 2: 1–4. Disponível em: https://doi.org/10.9789/2175-5361.2010.v0i0.%25p
Pinheiro, MARQ. Uso da terapia larval no tratamento de úlceras crônicas em pacientes diabéticos no Hospital Universitário Onofre Lopes- Natal, RN. [Mestrado em Ciências Biológicas]. Rio Grande do Norte (Brasil): Universidade Federal do Rio Grande do Norte; 2014. [acesso em 10 de fevereiro de 2022]. Disponível em: https://repositorio.ufrn.br/handle/123456789/23572
Sherman RA. Maggot Therapy Takes Us Back to the Future of Wound Care: New and Improved Maggot Therapy for the 21st Century. Journal of Diabetes Science and Technology, 3(2), 336-344; 2009.
Sherman RA. Maggot versus conservative debridement therapy for the treatment of pressure ulcers. Wound Repair Regeneration [Internet]. 2002 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 10: 208–214. Disponível em: https://doi.org/10.1046/j.1524-475X.2002.10403.x
Marcondes CB. Terapia larval de lesões de pele causadas por diabetes e outras doenças. Rev. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. [Internet]. 2006 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 48: 320–320. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0036-46652006000600014
Santos NQ. A resistência bacteriana no contexto da infecção hospitalar. Texto & contexto enfermagem [Internet]. 2004 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 13: 64–70. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0104-07072004000500007
Ullyett GC. Competition for food and allied phenomena in sheep-blowfly populations. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. [Internet]. 1950 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 234(610), 77-174. Disponível em: https://doi.org/10.1098/rstb.1950.0001
Aguiar-Coelho VM, Queiroz MMC, Milward-de-Azevedo EMV. Relações intra-específicas de Cochliomyia macellaria (Fabricius) e Chrysomya albiceps (Wiedemann), Chrysomya megacephala (Fabricius) e Cochliomyia macellaria (Fabricius) (Calliphoridae, Díptera) sob condições de laboratório. Revista Brasileira de Entomologa [Internet]. 1996 [acesso em 10 de Fevereiro de 2022]; 12 (4). Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0101-81751995000400025
Ferraz ACP, Dallavecchia DL, Silva DC, Carvalho RP, Filho RGS, Aguiar-Coelho VM. Alternative Diets for Chrysomya putoria, an Old World Screwworm Fly. Journal of Insect Sciences[Internet]. 2012 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 12: 1–11. Disponível em: https://doi.org/10.1673/031.012.4301
Parra, JRP. Técnicas de criação de insetos para programas de controle biológico. 3º Ed. Piracicaba, FEALQ, 137p; 1996.
Barnes KM, Gennard DE. Rearing bactéria and maggots concurrently: a protocol using Lucilia sericata (Diptera: Calliphoridae) as a model species. Applied Entomology and Zoology [Internet]. 2013 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 48: 247–253. Disponível em: https://doi.org/10.1007/s13355-013-0181-7
Mello RS, Queiroz MMC, Aguiar-Coelho VM. Population fluctuations of calliphorid species (Diptera, Calliphoridae) in the Biological Reserve of Tinguá, state of Rio de Janeiro, Brazil. Iheringia, Série Zoologia [Internet]. 2007 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 97: 481–485. Disponível em: https://doi.org/10.1590/S0073-47212007000400019
Mello RP. Chave para identificação das formas adultas das espécies da família Calliphoridae (Diptera, Brachycera, Cyclorrhapha) encontradas no Brasil. Entomologia y vectores, 10(2), 255-268; 2003.
Barbosa LS, Jesus DML, Coelho VMA. Longevidade e capacidade reprodutiva de casais agrupados de Chrysomya megacephala (Fabricius, 1794) (Diptera, Calliphoridae) oriundos de lavras criadas em dieta natural e oligídica. Revista Brasileira de Zoociências 6(2); 2004.
Carneiro LT, Azevedo WTA, Aguiar VM, Couri MS. The Nocturnal Ovipositon Behavior of Chrysomya megacephala (Diptera: Calliphoridae) in Brazil and Its Forensic Implications. Journal of Medical Entomology [Internet]. 2021 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 58: 558–566. Disponível em: https://doi.org/10.1093/jme/tjaa239
Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). [Internet]. Módulo 6 - Controle de Qualidade em Microbiologia Clínica; 2008 [Acesso em 10 de fevereiro de 2022]. Disponível em: https://www.anvisa.gov.br/servicosaude/controle/rede_rm/cursos/boas_praticas/modulo6/esterilidade.htm
Salazar-Souza M, Couri MS, Aguiar VM. Chronology of the Intrapuparial Development of the Blowfly Chrysomya albiceps (Diptera: Calliphoridae): Application in Forensic Entomology. Journal of Medical Entomology [Internet]. 2018 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 55: 825–832. Disponível em: https://doi.org/10.1093/jme/tjy054
Estrada DA, Grella MD, Thyssen PJ, Linhares AX. Taxa de desenvolvimento de Chrysomya albiceps (Wiedemann) (Diptera: Calliphoridae) em dieta artificial acrescida de tecido animal para uso forense. Neotropical Entomology [Internet]. 2009 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 38 (2) . Disponível em: https://doi.org/10.1590/S1519-566X2009000200006
Sherman RA, Tran JMT. A simple, sterile food source for rearing the larvae of Lucilia sericata (Diptera: Calliphoridae). Medical and Veterinary Entomology [Internet]. 1995 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 9: 393–398. Disponível em: https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.1995.tb00011.x
Gruner SV, Slone DH. A Fresh Liver Agar Substrate for Rearing Small Numbers of Forensically Important Blow Flies (Diptera: Calliphoridae). Journal of Medical Entomology [Internet]. 2014 [acesso em 10 de fevereiro de 2022]; 51: 713–715. Disponível em: https://doi.org/10.1603/ME13070
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